目的 探讨肿瘤组织中CXC基序趋化因子受体6(CXCR6)与免疫检查点分子表达及CD4?T淋巴细胞浸润丰度的关系,阐明其对调节性T淋巴细胞(Treg)中功能的影响及其潜在作用机制。 方法 生物信息学分析采用肿瘤免疫估计资源(TIMER)数据库,收集10种实体瘤的转录组及免疫浸润数据,通过Pearson相关性分析法分析CXCR6与免疫检查点分子及CD4+T淋巴细胞浸润丰度的相关性。采用健康人外周血单个核细胞(PBMCs),分离扩增CD4?T淋巴细胞并诱导为Treg细胞,构建CXCR6 shRNA1~4#重组慢病毒载体。实验分为空白组(不加Treg)、对照组和CXCR6敲低组,经慢病毒转染后,将Treg与CD8?细胞毒性T淋巴细胞(CTLs)、T2肿瘤靶细胞共培养。采用流式细胞术检测Treg的纯度,荧光计数法测定靶细胞裂解率,酶联免疫吸附试验(ELISA)检测各类细胞中细胞因子水平,RNA测序技术检测细胞中差异基因的表达水平,实时荧光定量PCR(RT-qPCR)法检测CXCR6的敲低效率和细胞中肽酶抑制因子6(PI16)mRNA表达水平。 结果 生物信息学分析,CXCR6在10种实体瘤中与免疫检查点分子及CD4?T淋巴细胞浸润丰度均呈高度正相关关系(P<0.01),且与肿瘤纯度呈负相关关系(胶质母细胞瘤除外)(P<0.01)。实验成功获得高纯度CD4?T淋巴细胞(90.13%±3.7%)及CD25?Foxp3?Treg细胞(69.6%±3.4%),CXCR6-KD3#敲低效率最高(P<0.05)。与对照组比较,CXCR6敲低组靶细胞裂解率升高(P<0.01),Treg细胞中γ干扰素(IFN-γ)及肿瘤坏死因子α(TNF-α)水平升高(P<0.01),Treg细胞中PI16 mRNA表达水平升高(P<0.01),差异基因富集于胞外基质空间、细胞迁移调控及磷脂酰肌醇3-激酶 (PI3K)-蛋白激酶B(Akt)通路。 结论 CXCR6与10种实体瘤的免疫检查点分子表达及CD4?T淋巴细胞浸润高度相关,主要定位于肿瘤免疫微环境。敲低Treg细胞中CXCR6表达可减弱其免疫抑制功能并促进CTLs分泌相关细胞因子,其机制可能与上调Treg细胞中PI16 mRNA表达水平有关。